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<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[Atividade antifúngica e antiaderente do óleo essencial de Rosmarinus officinalis sobre Candida]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Aim: The objective of this study was to evaluate the antifungal and antiadherent activity of the essential oil from Rosmarinus officinalis (Rosemary) on Candida albicans (ATCC289065) and C. tropicalis (ATCC40042). Materials and Methods: The antifungal activity was determined by means of Minimum Inhibitory Concentration (MIC) and Minimum Fungicidal Concentration (MFC), which were obtained through microdilution and exhaustion techniques, respectively. The products were evaluated at an initial concentration of 72mg/ mL to 0.5625mg/mL. The antiadherent activity was evaluated according to the concentrations of MIC, 2MIC, and 4MIC. Inserted in sterile glass tubes were: one sterile acrylic resin specimen; 2mL of sterile Sabouraud Dextrose broth, 0.2mL of fungal inoculums, and 2mL of the essential oil from R. officinalis at tested concentrations, or sterile distilled water (Growth Control), or nystatin (100.000UI/ mL - Positive Control). The evaluated products were added under two conditions: (1) with the other members of the adherent's device (t=0h) and (2) 24h after the insertion of these components (t=24h). The microorganisms that adhered to the specimens were dispersed, diluted 10 and 100 times in sterile distilled water, and transferred, in triplicate, to Sabouraud Dextrose 4% agar plates. After 48 hours of incubation at 37°C, the number of Colony Forming Units per milliliter (CFU/mL) was determined for each specimen. The Mann Whitney and ANOVA tests (Tukey post-test) were also applied. Results: The MIC and MFC were determined at a concentration of 0.5625mg/mL. When compared to the growth control, the essential oil from R. officinalis inhibited adherence in all concentrations, but with a lower effect than with nystatin. A greater antiadherent activity could be observed for t=24h (p<0.001) and at a higher concentration of the natural product (p <0.05). Conclusion: The essential oil of R. officinalis exerted antifungal and antiadherent activity on C. albicans and C. tropicalis. Greater inhibition of C. albicans and of C. tropicalis could be observed for the concentration of 2.25mg/mL (4MIC) of the essential oil from R. officinalis.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p>&nbsp;</p>     <p><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"></a><a name="top"/><B>Atividade antif&uacute;ngica e antiaderente do &oacute;leo essencial de Rosmarinus officinalis sobre Candida</B></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Antifungal and antiadherent activity of the essential oil from Rosmarinus officinalis on Candida</B></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Yuri Wanderley Cavalcanti<sup>I</sup>; Leopoldina de F&aacute;tima Dantas de Almeida<sup>II</sup>; Wilton Wilney Nascimento Padilha<sup>III</sup></b></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <sup>I </sup>Bolsista de Inicia&ccedil;&atilde;o Cient&iacute;fica (PIBIC/UFPB/CNPq), Curso de Odontologia, Universidade Federal da Para&iacute;ba (UFPB), Jo&atilde;o Pessoa,PB, Brasil    <br> <sup>II</sup> Programa de P&oacute;s-Gradua&ccedil;&atilde;o em Odontologia, Universidade Federal da Para&iacute;ba (UFPB), Jo&atilde;o Pessoa, PB, Brasil    <br> <sup>III</sup> Departamento de Cl&iacute;nica e Odontologia Social, Curso de Odontologia, Universidade Federal da Para&iacute;ba (UFPB), Jo&atilde;o Pessoa, PB, Brasil</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">   Contato: yuri.wanderley@yahoo.com.br, leopoldinalmeida@hotmail.com, wiltonpadilha@yahoo.com.br</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a href="#back">Autor correspondente</a></font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMO</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Objetivo: Avaliar a atividade antif&uacute;ngica e antiaderente do &oacute;leo essencial de Rosmarinus officinalis (Alecrim) sobre Candida albicans (ATCC289065) e C. tropicalis (ATCC40042). Materiais e M&eacute;todos: Determinou-se a atividade antif&uacute;ngica pela Concentra&ccedil;&atilde;o Inibit&oacute;ria M&iacute;nima (CIM) e Concentra&ccedil;&atilde;o Fungicida M&iacute;nima (CFM), obtidas atrav&eacute;s das t&eacute;cnicas de microdilui&ccedil;&atilde;o e de esgotamento, respectivamente. Os produtos foram avaliados da concentra&ccedil;&atilde;o inicial de 72mg/mL at&eacute; 0,5625mg/mL. A atividade antiaderente foi avaliada segundo as concentra&ccedil;&otilde;es CIM, 2CIM e 4CIM. Em tubos de vidro est&eacute;reis, foram adicionados: 1 corpo de prova de resina acr&iacute;lica est&eacute;ril; 2mL de Caldo Sabouraud-Dextrose est&eacute;ril; 0,2mL do inoculo f&uacute;ngico e 2mL do &oacute;leo essencial de R. officinalis nas concentra&ccedil;&otilde;es testadas, ou &aacute;gua destilada est&eacute;ril (Controle de Crescimento), ou nistatina (100.000UI/mL &ndash; Controle Positivo). Os produtos testados foram adicionados em duas condi&ccedil;&otilde;es: junto aos demais componentes do dispositivo de ader&ecirc;ncia (t=0h); e ap&oacute;s 24h da inser&ccedil;&atilde;o desses componentes (t=24h). Os microrganismos que aderiram aos corpos de prova foram dispersos, dilu&iacute;dos 10 e 100 vezes em &aacute;gua destilada est&eacute;ril e transferidos, em triplicata, para placas de agar Sabouraud Dextrose 4%. Ap&oacute;s 48 horas de incuba&ccedil;&atilde;o a 37&ordm;C, o n&uacute;mero de Unidades Formadoras de Col&ocirc;nia por mililitro (UFC/ mL) foi determinada para cada esp&eacute;cime. Aplicaram-se os testes Mann Whitney e ANOVA (p&oacute;s-testes de Tukey e Dunnet). Resultados: A CIM e CFM foram determinadas na concentra&ccedil;&atilde;o 0,5625mg/mL. Quando comparado ao controle de crescimento, o &oacute;leo essencial de R. officinalis provocou inibi&ccedil;&atilde;o da ader&ecirc;ncia em todas as concentra&ccedil;&otilde;es testadas, por&eacute;m com efeito inferior &agrave; nistatina. Observou-se maior atividade antiaderente para t=24h (p&lt;0,001) e maior concentra&ccedil;&atilde;o do produto natural (p&lt;0,05). Conclus&atilde;o: O &oacute;leo essencial de R. officinalis exerceu atividade antif&uacute;ngica e antiaderente sobre C. albicans e C. tropicalis. Melhor desempenho foi observado para concentra&ccedil;&atilde;o 2,25mg/mL (4CIM) do &oacute;leo essencial de R. officinalis.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Descritores: </B>&Oacute;leos vol&aacute;teis. Produtos biol&oacute;gicos. Candid&iacute;ase bucal. Produtos com a&ccedil;&atilde;o antimicrobiana.</font></p> <hr size="1" noshade>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>ABSTRACT</B> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aim: The objective of this study was to evaluate the antifungal and antiadherent activity of the essential oil from Rosmarinus officinalis (Rosemary) on Candida albicans (ATCC289065) and C. tropicalis (ATCC40042). Materials and Methods: The antifungal activity was determined by means of Minimum Inhibitory Concentration (MIC) and Minimum Fungicidal Concentration (MFC), which were obtained through microdilution and exhaustion techniques, respectively. The products were evaluated at an initial concentration of 72mg/ mL to 0.5625mg/mL. The antiadherent activity was evaluated according to the concentrations of MIC, 2MIC, and 4MIC. Inserted in sterile glass tubes were: one sterile acrylic resin specimen; 2mL of sterile Sabouraud Dextrose broth, 0.2mL of fungal inoculums, and 2mL of the essential oil from R. officinalis at tested concentrations, or sterile distilled water (Growth Control), or nystatin (100.000UI/ mL - Positive Control). The evaluated products were added under two conditions: (1) with the other members of the adherent's device (t=0h) and (2) 24h after the insertion of these components (t=24h). The microorganisms that adhered to the specimens were dispersed, diluted 10 and 100 times in sterile distilled water, and transferred, in triplicate, to Sabouraud Dextrose 4% agar plates. After 48 hours of incubation at 37&deg;C, the number of Colony Forming Units per milliliter (CFU/mL) was determined for each specimen. The Mann Whitney and ANOVA tests (Tukey post-test) were also applied. Results: The MIC and MFC were determined at a concentration of 0.5625mg/mL. When compared to the growth control, the essential oil from R. officinalis inhibited adherence in all concentrations, but with a lower effect than with nystatin. A greater antiadherent activity could be observed for t=24h (p&lt;0.001) and at a higher concentration of the natural product (p &lt;0.05). Conclusion: The essential oil of R. officinalis exerted antifungal and antiadherent activity on C. albicans and C. tropicalis. Greater inhibition of C. albicans and of C. tropicalis could be observed for the concentration of 2.25mg/mL (4MIC) of the essential oil from R. officinalis.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Uniterms: </B>Oils, volatile. Biological products. Oral candidiasis. Products with antimicrobial action.</font> </p> <hr noshade size="1">     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> INTRODU&Ccedil;&Atilde;O</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A candid&iacute;ase bucal &eacute; uma das infec&ccedil;&otilde;es humanas de natureza f&uacute;ngica mais comum; sendo descrita como uma infec&ccedil;&atilde;o oportunista, frequentemente envolvida com a altera&ccedil;&atilde;o da microbiota bucal, doen&ccedil;as sist&ecirc;micas e redu&ccedil;&atilde;o da imunidade do hospedeiro<sup>1,2</sup>. Entre as cepas envolvidas com o desenvolvimento da candid&iacute;ase bucal, a Candida albicans &eacute; a esp&eacute;cie mais prevalente e de maior patogenicidade<sup>1,3</sup>. C. tropicalis, C. krusei, C. parapsilosis e C. guilliermondii tamb&eacute;m fazem parte do curso da doen&ccedil;a e, junto a C. albicans, chegam a representar mais de 80% dos isolados cl&iacute;nicos<sup>1,3</sup>. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Segundo Rex et al.<sup>4</sup> e Khan et al.<sup>5</sup>, as esp&eacute;cies de Candida t&ecirc;m se mostrado resistentes diante da utiliza&ccedil;&atilde;o de alguns medicamentos antif&uacute;ngicos sint&eacute;ticos. Com o objetivo de identificar subst&acirc;ncias alternativas ao uso de medicamentos tradicionais, foram desenvolvidos estudos sobre a atividade antimicrobiana de &oacute;leos essenciais<sup>6-9</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Desta forma, a busca de produtos naturais que apresentem uma a&ccedil;&atilde;o antif&uacute;ngica eficiente frente a microrganismos resistentes se mostra uma alternativa necess&aacute;ria para o controle da candid&iacute;ase bucal<sup>6,9</sup>. A atividade fungiost&aacute;tica do &oacute;leo essencial de Rosmarinus officinalis (Alecrim) foi apontada por Lima et al.<sup>6</sup>, Fontenelle et al.<sup>7</sup> e Pozzatti et al.<sup>8</sup>, os quais empregaram diferentes t&eacute;cnicas. Segundo Fontenelle et al.<sup>7</sup>, o &oacute;leo essencial de R. officinalis apresenta atividade antif&uacute;ngica sobre Candida em baixas concentra&ccedil;&otilde;es. Por&eacute;m, n&atilde;o foram identificados estudos sobre a atividade antiaderente deste produto natural. Assim, verificase a necessidade de aprofundar as investiga&ccedil;&otilde;es sobre a atividade antif&uacute;ngica desses produtos, com o objetivo de justificar e validar o uso cl&iacute;nico dos &oacute;leos essenciais. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Esta pesquisa se justifica pela necessidade de produzir novas informa&ccedil;&otilde;es sobre os efeitos fungiost&aacute;tico, fungicida e antiaderente dos &oacute;leos essenciais sobre Candida. O objetivo deste estudo foi avaliar a atividade antif&uacute;ngica e antiaderente do &oacute;leo essencial de Rosmarinus officinalis (Alecrim) sobre Candida albicans e Candida tropicalis.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> MATERIAIS E M&Eacute;TODOS</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Realizou-se um estudo de abordagem indutiva, com procedimento comparativo descritivo e t&eacute;cnica de documenta&ccedil;&atilde;o direta em laborat&oacute;rio<sup>10</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> Microrganismos utilizados</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> As cepas de refer&ecirc;ncia utilizadas no estudo foram Candida albicans (ATCC 289065) e C. tropicalis (ATCC 40042). Os microrganismos foram obtidos do Laborat&oacute;rio de Materiais de Refer&ecirc;ncia do Instituto Nacional de Controle de Qualidade em Sa&uacute;de (Funda&ccedil;&atilde;o Oswaldo Cruz &ndash; FIOCRUZ, Rio de Janeiro - RJ, Brasil). As cepas foram reativadas em Caldo Sabouraud-Dextrose (DIFCO&reg;, Detroit, Michigan, EUA), a 37&ordm;C e estocadas em &Agrave;gar Sabouraud-Dextrose 4% (DIFCO&reg;, Detroit, Michigan, EUA) no Laborat&oacute;rio de Microbiologia Oral &ndash; N&uacute;cleo de Medicina Tropical do Centro de Ci&ecirc;ncias da Sa&uacute;de da Universidade Federal da Para&iacute;ba. Para condu&ccedil;&atilde;o do estudo, suspens&otilde;es f&uacute;ngicas dos microrganismos foram preparadas em solu&ccedil;&atilde;o salina, sob a concentra&ccedil;&atilde;o 1,5x106 microrganismos/mL, equivalente ao tubo 106 da Escala de MacFarland. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> Produtos testados</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para avalia&ccedil;&atilde;o antiaderente in vitro foi utilizado o &oacute;leo essencial de Rosmarinus officinalis (alecrim), obtido da empresa Ferquima&reg; (Ind. e Com. Ltda. Vargem Grande Paulista-SP, Brasil), a qual cedeu Laudo T&eacute;cnico com especifica&ccedil;&otilde;es. Utilizou-se o lote 141 do &oacute;leo essencial de R. officinalis (Alecrim), isento de impurezas, oriundo da Tun&iacute;sia e com densidade 0,912g/mL (20&ordm;C). Os principais componentes identificados foram 1,8 Cineol, limoneno, para-cimeno, &alpha;-pineno e C&acirc;nfora. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> Confec&ccedil;&atilde;o dos corpos de prova</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para montagem dos dispositivos de ader&ecirc;ncia f&uacute;ngica, foram confeccionados corpos de prova de resina acr&iacute;lica incolor quimicamente polimeriz&aacute;vel (Vipi Flash, VIPI Produtos Odontol&oacute;gicos Ltda., Pirassununga-SP, Brasil), com dimens&otilde;es 10x10x5mm. Os esp&eacute;cimes foram preparados de acordo com as instru&ccedil;&otilde;es do fabricante (temperatura de 25&ordm;C, em igual propor&ccedil;&atilde;o de p&oacute; e l&iacute;quido, sem incorpora&ccedil;&atilde;o de bolhas de ar), e posteriormente imersos em &aacute;gua destilada por 24h, a 37&ordm;C, para libera&ccedil;&atilde;o de mon&ocirc;mero residual. As superf&iacute;cies dos corpos de prova foram submetidas ao acabamento e polimento com lixas d'&aacute;gua de granula&ccedil;&atilde;o 200, 400 e 600 (3M-ESPE, Campinas-SP, Brasil) e posteriormente limpas com aparelho ultra-s&ocirc;nico. Todos os esp&eacute;cimes foram armazenados em tubo de vidro com &aacute;gua destilada e esterilizados em autoclave (121&ordm;C durante 20 minutos) para posterior utiliza&ccedil;&atilde;o. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> Ensaio da avalia&ccedil;&atilde;o antif&uacute;ngica de R. officinalis sobre C. albicans e C. tropicalis</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">O &oacute;leo essencial utilizado neste estudo foi inicialmente dilu&iacute;do em &aacute;gua destilada est&eacute;ril e Tween 80 (Farmaf&oacute;rmula Farm&aacute;cia de Manipula&ccedil;&atilde;o, Jo&atilde;o Pessoa-PB, Brasil), obtendo-se a concentra&ccedil;&atilde;o 16%, considerada a solu&ccedil;&atilde;o-padr&atilde;o inicial para todos os produtos avaliados. Para obten&ccedil;&atilde;o dessas dilui&ccedil;&otilde;es, considerou-se a densidade do produto igual a 0,9 g/mL, conforme especifica&ccedil;&otilde;es do fornecedor. Utilizou-se o m&eacute;todo de dilui&ccedil;&atilde;o descrito por Lima et al.6 e Aligiannis et al.11 e, no qual foram adicionados em tubos de vidro est&eacute;ril: 0,8 mL do &oacute;leo essencial; 0,05 mL de Tween 80; e 4,2 mL de &aacute;gua destilada est&eacute;ril. O conjunto foi agitado durante 5 minutos em aparelho agitador de solu&ccedil;&otilde;es tipo Vortex (Mod. AP56, Phoenix, Araraquara-SP, Brasil) e a concentra&ccedil;&atilde;o final obtida foi de 16%, equivalente a 144 mg/mL. Para avalia&ccedil;&atilde;o da Concentra&ccedil;&atilde;o Inibit&oacute;ria M&iacute;nima (CIM), os &oacute;leos essenciais foram dilu&iacute;dos de forma seriada, mediante emprego da t&eacute;cnica da microdilui&ccedil;&atilde;o<sup>9,11</sup>. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A determina&ccedil;&atilde;o da CIM foi realizada em placas de microdilui&ccedil;&atilde;o com 96 po&ccedil;os (ALAMAR&reg;, Diadema, S&atilde;o Paulo, Brasil), dispostos em 12 colunas (1 a 12) e 8 linhas (A a H). Cada uma dessas placas destinou-se a an&aacute;lise de um microrganismo. Em cada um dos po&ccedil;os das placas de microdilui&ccedil;&atilde;o foram inseridos 100&mu;L de caldo Sabouraud-Dextrose duplamente concentrado. Em seguida, inseriu-se 100&mu;L da emuls&atilde;o do &oacute;leo essencial de R. officinalis, obtendo-se a concentra&ccedil;&atilde;o inicial de 8% (72 mg/ mL) na primeira linha da placa de microdilui&ccedil;&atilde;o<sup>9,11</sup>. As concentra&ccedil;&otilde;es subseq&uuml;entes dos &oacute;leos essenciais foram obtidas ap&oacute;s dilui&ccedil;&atilde;o seriada dos produtos naturais na placa de microdilui&ccedil;&atilde;o, partindo-se da concentra&ccedil;&atilde;o inicial de 8% (Linha A) at&eacute; 0,0625% (Linha H), pela transfer&ecirc;ncia de 100&mu;L do conte&uacute;do ao po&ccedil;o subseq&uuml;ente<sup>11</sup>. Para os po&ccedil;os da linha H, foram dispensados 100&mu;L do conte&uacute;do, de modo a igualar o volume total dos po&ccedil;os. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De modo a validar a metodologia empregada neste estudo, empregou-se o Controle Positivo (nistatina - suspens&atilde;o comercial - 100.000 UI/mL); o Controle de Crescimento (suspens&atilde;o f&uacute;ngica em desenvolvimento, sem adi&ccedil;&atilde;o de antif&uacute;ngicos); e o Controle de Esterilidade (Meio de cultura est&eacute;ril, sem adi&ccedil;&atilde;o de antif&uacute;ngicos ou suspens&otilde;es de microrganismos) </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Posteriormente, foram inseridos 10&mu;L da suspens&atilde;o f&uacute;ngica de C. albicans ou de C. tropicalis (1,5x106 microrganismos/mL) em todos os po&ccedil;os, exceto &agrave; coluna correspondente ao Controle de Esterilidade. As placas foram incubadas em estufa bacteriol&oacute;gica a 37&ordm;, por 48h. A CIM correspondeu &agrave; &uacute;ltima dilui&ccedil;&atilde;o dos &oacute;leos essenciais na qual n&atilde;o foi verificada a presen&ccedil;a de precipitado f&uacute;ngico ou turva&ccedil;&atilde;o no meio de cultura ap&oacute;s o per&iacute;odo de incuba&ccedil;&atilde;o<sup>8,11</sup>.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> A Concentra&ccedil;&atilde;o Fungicida M&iacute;nima (CFM) foi obtida por meio da semeadura, em &Aacute;gar Sabouraud-Dextrose, de al&iacute;quotas de 10&mu;L das dilui&ccedil;&otilde;es correspondentes a CIM e duas imediatamente anteriores (2CIM e 4CIM)<sup>8,9</sup>. Ap&oacute;s a semeadura dos conte&uacute;dos dos po&ccedil;os das placas de microdilui&ccedil;&atilde;o, as placas de petri foram incubadas em estufa bacteriol&oacute;gica a 37&ordm;, por 24h. A CFM foi considerada a menor concentra&ccedil;&atilde;o subst&acirc;ncia que impediu o crescimento vis&iacute;vel do subcultivo ou a forma&ccedil;&atilde;o de at&eacute; tr&ecirc;s Unidades Formadoras de Col&ocirc;nia (UFC)8. Os ensaios para determina&ccedil;&atilde;o da CIM e CFM foram realizados em triplicata.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> Ensaio da avalia&ccedil;&atilde;o antiaderente de R. officinalis sobre C. albicans e C. tropicalis</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> A atividade antiaderente do &oacute;leo essencial de R. officinalis sobre C. albicans e C. tropicalis foi avaliada separadamente, segundo a t&eacute;cnica descrita por Carreto et al.<sup>12</sup>. O &oacute;leo essencial de R. officinalis foi avaliado nas concentra&ccedil;&otilde;es correspondentes a CIM e duas imediatamente superiores (2CIM e 4CIM). Em tubos de vidro est&eacute;ril foram adicionados: um corpo de prova de resina acr&iacute;lica est&eacute;ril; 0,2mL da suspens&atilde;o f&uacute;ngica de C. albicans ou de C. tropicalis; 2mL de Caldo Sabouraud-Dextrose est&eacute;ril; 2mL da dilui&ccedil;&atilde;o do &oacute;leo essencial de R. officinalis ou &aacute;gua destilada est&eacute;ril (controle de crescimento) ou nistatina 100.000UI/mL (controle positivo)<sup>12</sup>. Os tubos foram tampados e incubados em estufa bacteriol&oacute;gica a 37&ordm;C por 48h. O controle de esterilidade do meio de cultura e dos corpos de prova foi verificado pela aus&ecirc;ncia de turva&ccedil;&atilde;o do meio nos tubos sem a adi&ccedil;&atilde;o do inoculo e dos produtos testados. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A atividade antiaderente do &oacute;leo essencial de R. officinalis e do controle positivo foi avaliada em duas condi&ccedil;&otilde;es: o produto foi inserido junto aos demais componentes do dispositivo de ader&ecirc;ncia (t=0h); e o produto foi inserido ap&oacute;s 24h da inser&ccedil;&atilde;o dos demais componentes (t=24h). Na primeira condi&ccedil;&atilde;o, prevalece o estado planct&ocirc;nico das c&eacute;lulas; enquanto na segunda situa&ccedil;&atilde;o se verifica a forma&ccedil;&atilde;o de agregados celulares, a secre&ccedil;&atilde;o de matriz extracelular e ades&atilde;o<sup>13</sup>. Dessa forma, nos tubos correspondentes a condi&ccedil;&atilde;o t=24h, o &oacute;leo essencial de R. officinalis ou a nistatina 100.000UI/ mL (controle positivo) foram inseridos somente ap&oacute;s 24h do processo de incuba&ccedil;&atilde;o. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Ap&oacute;s a incuba&ccedil;&atilde;o por 48h, os corpos de prova foram transferidos para tubos de ensaio contendo 1mL de solu&ccedil;&atilde;o fisiol&oacute;gica est&eacute;ril (NaCl 0,85%), e agitados em um agitador de tubos (Vortex) por 60 segundos. Os microrganismos que aderiram aos corpos de prova foram dispersos, dilu&iacute;dos 10 e 100 vezes em &aacute;gua destilada est&eacute;ril e transferidos, em triplicata, para placas de agar Sabouraud Dextrose 4%12. Ap&oacute;s 48 horas de incuba&ccedil;&atilde;o a 37&ordm;C, o n&uacute;mero de Unidades Formadoras de Col&ocirc;nia por mililitro (UFC/mL) foi determinada para cada esp&eacute;cime. As placas escolhidas para a contagem foram aquelas que apresentaram entre 30 e 300 col&ocirc;nias<sup>12</sup>. Placas com mais de 300 col&ocirc;nias foram consideradas incont&aacute;veis.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> An&aacute;lise estat&iacute;stica</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Para a avalia&ccedil;&atilde;o da atividade antif&uacute;ngica, as dilui&ccedil;&otilde;es seriadas nas quais se observou CIM e/ ou CFM foram analisadas descritivamente. Para avalia&ccedil;&atilde;o da atividade antiaderente, o n&uacute;mero de UFC/mL consistiu nas unidades de compara&ccedil;&atilde;o estat&iacute;stica. Os resultados, expressos em UFC/mL, foram analisados segundo a concentra&ccedil;&atilde;o do &oacute;leo essencial de R. officinalis (CIM, 2CIM, ou 4CIM) e segundo o estado de desenvolvimento microbiano (t=0h &ndash; estado planct&ocirc;nico; t=24h &ndash; estado de agrega&ccedil;&atilde;o). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Os dados foram tabulados no programa GraphPad Prism 5.0 (Programa GraphPad for Windows, San Diego, CA - USA), sendo adotado n&iacute;vel de signific&acirc;ncia de 5%. Para avalia&ccedil;&atilde;o antif&uacute;ngica, obteve-se a m&eacute;dia aritm&eacute;tica das concentra&ccedil;&otilde;es correspondentes a CIM e a CFM<sup>9</sup>. Para avalia&ccedil;&atilde;o antiaderente e compara&ccedil;&atilde;o da concentra&ccedil;&atilde;o do &oacute;leo essencial de R. officinalis foi empregada an&aacute;lise de vari&acirc;ncia ANOVA e p&oacute;steste de Tukey<sup>7</sup>. O efeito provocado pelas diferentes concentra&ccedil;&otilde;es do &oacute;leo essencial de R. officinalis, nos tempos t=0h e t=24h, foi comparado com o Controle de Crescimento das cepas de C. albicans e de C. tropicalis, bem como com o efeito provocado pela nistatina, sendo aplicado o teste ANOVA e p&oacute;s-teste de Dunnet. Na compara&ccedil;&atilde;o da atividade antiaderente segundo o estado de desenvolvimento microbiano foi empregado o teste Mann Whitney. </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESULTADOS</b> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Considerando a avalia&ccedil;&atilde;o antif&uacute;ngica do &oacute;leo essencial de R. officinalis, a metodologia empregada neste estudo foi validada pela aus&ecirc;ncia de crescimento f&uacute;ngico para o Controle de Esterilidade e Controle Positivo (nistatina - 100.000 UI/mL), bem como pela presen&ccedil;a de crescimento f&uacute;ngico para o controle de crescimento. A CIM e a CFM do &oacute;leo essencial de R. officinalis frente as cepas C. albicans (ATCC289065) e C. tropicalis (ATCC40042) foi igual a 0,5625mg/ mL. Conforme os resultados obtidos para a CIM e CFM do &oacute;leo essencial de R. officinalis sobre C. albicans e C. tropicalis, os valores de CIM, 2CIM, 4CIM foram iguais a, respectivamente, 0,5625mg/ mL; 1,125mg/mL e 2,25mg/mL. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Observou-se aus&ecirc;ncia de ader&ecirc;ncia f&uacute;ngica para os corpos de prova correspondentes ao Controle Positivo (nistatina - 100.000UI/mL) e para o Controle de Esterilidade, bem como pela presen&ccedil;a de ader&ecirc;ncia f&uacute;ngica para o Controle de Crescimento. A <a href="#tab01">Tabela 1</a> apresenta os resultados da a&ccedil;&atilde;o antiaderente do &oacute;leo essencial de R. officinalis sobre C. albicans e C. tropicalis segundo a concentra&ccedil;&atilde;o (CIM, 2CIM, ou 4CIM) e segundo o estado de desenvolvimento microbiano (t=0h &ndash; estado planct&ocirc;nico; t=24h &ndash; estado de agrega&ccedil;&atilde;o).Considerando o estado planct&ocirc;nico (t=0h) das cepas C. albicans e C. tropicalis, as concentra&ccedil;&otilde;es 1,125mg/mL (2CIM) e 2,25mg/mL (4CIM) apresentaram maior atividade antiaderente do que a concentra&ccedil;&atilde;o 0,5625mg/ mL (CIM), sendo esta diferen&ccedil;a estatisticamente significante (p&lt;0,05). Para o estado de agrega&ccedil;&atilde;o celular (t=24h), as concentra&ccedil;&otilde;es 0,5625mg/mL e 2,25mg/mL apresentaram maior inibi&ccedil;&atilde;o da ader&ecirc;ncia de C. albicans e C. tropicalis do que a concentra&ccedil;&atilde;o 1,125mg/mL, sendo observada diferen&ccedil;a estatisticamente significante (p&lt;0,05). Comparando-se os resultados obtidos para t=0h e t=24h, observou-se maior atividade antiaderente para t=24h, sendo esta diferen&ccedil;a estatisticamente significante (p&lt;0,001). </font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><a name="tab01"></a></p>     <p>&nbsp; </p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/aodo/v47n3/a05tab01.jpg">     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Realizou-se tamb&eacute;m a compara&ccedil;&atilde;o do efeito provocado pelo &oacute;leo essencial de R. officinalis, nos tempos t=0h e t=24h, com o Controle de Crescimento das cepas de C. albicans e de C. tropicalis, bem como com o efeito provocado pela nistatina. Para os tempos t=0h e t=24h observou-se diferen&ccedil;a estatisticamente significante (p&lt;0,01) entre o controle de crescimento de C. albicans e C. tropicalis e o efeito provocado pelo &oacute;leo essencial de R. officinalis e pela nistatina. Para t=0h e para t=24h tamb&eacute;m foi observada diferen&ccedil;a estatisticamente significante entre o efeito provocado pela nistatina e a atividade antiaderente do &Oacute;leo Essencial de R. officinalis nas concentra&ccedil;&otilde;es CIM, 2CIM e 4CIM. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A partir das an&aacute;lises estat&iacute;sticas verificou-se que, para t=0h e t=24h, a concentra&ccedil;&atilde;o de 2,25mg/ mL (4CIM) provocou maior inibi&ccedil;&atilde;o da ader&ecirc;ncia de C. albicans e C. tropicalis. Quando comparados ao controle de crescimento das cepas testadas, o &oacute;leo essencial de R. officinalis (nas concentra&ccedil;&otilde;es CIM, 2CIM e 4CIM) provocou redu&ccedil;&atilde;o significativa do total de Unidades Formadoras de Col&ocirc;nias por mililitro. Quando comparadas &agrave; nistatina, as concentra&ccedil;&otilde;es testadas do &oacute;leo essencial provocaram menor inibi&ccedil;&atilde;o da ader&ecirc;ncia de C. albicans e de C. tropicalis</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> DISCUSS&Atilde;O</B></font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">   As t&eacute;cnicas para determina&ccedil;&atilde;o da CIM e CFM empregadas neste estudo foram baseadas nos protocolos descritos por Aligiannis et al.<sup>11</sup> e Castro &amp; Lima<sup>9</sup>, os quais representam modifica&ccedil;&atilde;o das normas estabelecidas pelo National Comitte for Clinical Laboratory Standard (NCCLS)<sup>14</sup>. O m&eacute;todo de refer&ecirc;ncia para t&eacute;cnica de microdilui&ccedil;&atilde;o e determina&ccedil;&atilde;o da sensibilidade de leveduras &agrave; terapia antif&uacute;ngica (M7-A2), descrita por NCCLS<sup>14</sup>, considera a avalia&ccedil;&atilde;o de antif&uacute;ngicos sint&eacute;ticos, a utiliza&ccedil;&atilde;o do meio de cultura RPMI-1640 e a padroniza&ccedil;&atilde;o da concentra&ccedil;&atilde;o inicial das subst&acirc;ncias testadas em 64&mu;g/mL ou 16 &mu;g/mL.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> O presente estudo foi desenvolvido em condi&ccedil;&otilde;es diferentes das estabelecidas por NCCLS<sup>14</sup>. Segundo Nascimento et al.<sup>15</sup>, a normatiza&ccedil;&atilde;o M7- A2 proposta pelo NCCLS n&atilde;o pode ser seguida &agrave; risca quando da avalia&ccedil;&atilde;o antimicrobiana de &oacute;leos essenciais. Considera-se que as propriedades qu&iacute;micas desses produtos naturais diferem daquelas apresentadas pelas subst&acirc;ncias para qual a norma foi padronizada, ou seja, a normatiza&ccedil;&atilde;o do NCCLS n&atilde;o atende &agrave;s especificidades dos &oacute;leos essenciais<sup>15</sup>. Dessa forma, foi reproduzido o protocolo descrito por Aligiannis et al.<sup>11</sup> e por Castro &amp; Lima<sup>9</sup>, no qual foi empregado o meio de cultura Caldo Sabouraud-Dextrose, a nistatina como controle positivo, a dilui&ccedil;&atilde;o seriada dos produtos testados e a incorpora&ccedil;&atilde;o de emulsificante (Tween 80) na prepara&ccedil;&atilde;o dos &oacute;leos essenciais. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Os &oacute;leos essenciais s&atilde;o subst&acirc;ncias vol&aacute;teis, que apresentam insolubilidade em &aacute;gua e complexidade qu&iacute;mica, o que dificulta a padroniza&ccedil;&atilde;o de t&eacute;cnicas confi&aacute;veis, que possam ser reproduzidas e validadas, de modo a alcan&ccedil;ar resultados seguros<sup>9,15,16</sup>. Dessa forma, para minimizar a inconsist&ecirc;ncia dos resultados obtidos, foi empregada a t&eacute;cnica de microdilui&ccedil;&atilde;o em caldo, com o objetivo de proporcionar maior contato entre os produtos testados e as c&eacute;lulas f&uacute;ngicas. Utilizouse tamb&eacute;m um agente emulsificante (Tween 80) para permitir a dilui&ccedil;&atilde;o dos &oacute;leos essenciais em meio aquoso. Essas medidas contribuem para redu&ccedil;&atilde;o de vi&eacute;s metodol&oacute;gico e compara&ccedil;&atilde;o entre os produtos naturais testados<sup>9,16</sup>. Ao comparar as t&eacute;cnicas de disco-difus&atilde;o e microdilui&ccedil;&atilde;o para avalia&ccedil;&atilde;o da atividade antif&uacute;ngica de produtos naturais, Scorzoni et al.<sup>16</sup> identificaram que a microdilui&ccedil;&atilde;o foi mais sens&iacute;vel para determina&ccedil;&atilde;o da CIM. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">O Controle Positivo (nistatina - suspens&atilde;o comercial - 100.000 UI/mL), o Controle de Esterilidade e o Controle de Crescimento foram empregados de modo a validar a t&eacute;cnica utilizada neste estudo e permitir a compara&ccedil;&atilde;o com os resultados do &oacute;leo essencial. O Controle de Esterilidade confirmou a aus&ecirc;ncia de contamina&ccedil;&atilde;o extr&iacute;nseca do meio de cultura e dos corpos de prova. O Controle de Crescimento comprovou a viabilidade das cepas que n&atilde;o recebeu tratamento antif&uacute;ngico. A aus&ecirc;ncia de crescimento f&uacute;ngico diante da nistatina (100.000 UI/mL) evidenciou a susceptibilidade das amostras frente a um antif&uacute;ngico sint&eacute;tico. No entanto, as diferen&ccedil;as entre a natureza qu&iacute;mica do &oacute;leo essencial e do Controle Positivo n&atilde;o permitem comparar os resultados obtidos por essas subst&acirc;ncias<sup>15</sup>. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Os resultados deste estudo apontaram que o melhor desempenho do &oacute;leo essencial de R. officinalis foi observado para concentra&ccedil;&atilde;o de 2,25mg/mL (4CIM). Entretanto, o efeito provocado pela nistatina na redu&ccedil;&atilde;o do total de UFC/mL das cepas testadas foi estatisticamente superior ao apresentado pelo produto natural (p&lt;0,01). Portanto, considerou-se que o &oacute;leo essencial de R. officinalis, nas concentra&ccedil;&otilde;es testadas, apresentou atividade antiaderente menos efetiva que a nistatina.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> A atividade antif&uacute;ngica do &oacute;leo essencial de R. officinalis foi demonstrada por Lima et al.<sup>6</sup> e Packer &amp; Luz<sup>17</sup>, os quais utilizaram a t&eacute;cnica de difus&atilde;o em agar e identificaram a&ccedil;&atilde;o fungiost&aacute;tica em concentra&ccedil;&otilde;es superiores a 8%. Segundo Fontenelle et al.<sup>7</sup>, o &oacute;leo essencial de R. officinalis frente C. albicans e C. tropicalis apresentou CIM entre 0,62mg/mL e 2,5mg/mL, e CFM entre 1,25mg/ mL e 2,5mg/mL, determinados pela t&eacute;cnica de microdilui&ccedil;&atilde;o. Dessa forma, os resultados deste estudo corroboram os achados de Fontenelle et al.<sup>7</sup>. N&atilde;o foram encontradas na literatura estudos sobre a atividade antiaderente do &oacute;leo essencial de R. officinalis. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para determina&ccedil;&atilde;o das concentra&ccedil;&otilde;es do &oacute;leo essencial de R. officinalis a serem utilizadas no ensaio de atividade antiaderente, a metodologia empregada neste estudo considerou os resultados do ensaio para determina&ccedil;&atilde;o da CIM e CFM. Conforme observado neste estudo, o &oacute;leo essencial de R. officinalis provocou efeito antiaderente na concentra&ccedil;&atilde;o 0,5625mg/mL, o que corrobora os achados da literatura quanto a atividade antif&uacute;ngica<sup>7</sup>. Por&eacute;m, melhores resultados foram observados para a concentra&ccedil;&atilde;o de 2,25mg/mL, na qual o &oacute;leo essencial de R. officinalis inibiu a ader&ecirc;ncia de ambas cepas de C. albicans e C. tropicalis nos estados planct&ocirc;nico (t=0h) e de agrega&ccedil;&atilde;o (t=24h). </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Segundo Chandra et al.<sup>13</sup>, as c&eacute;lulas de Candida tem a capacidade de realizarem coagrega&ccedil;&atilde;o e excretar matriz extracelular, o que contribui para a ader&ecirc;ncia a superf&iacute;cies acr&iacute;licas e polim&eacute;ricas. Os resultados de Chandra et al.<sup>13</sup> demonstraram que as c&eacute;lulas de C. albicans, quando em estado planct&ocirc;nico, s&atilde;o mais suscept&iacute;veis a a&ccedil;&atilde;o de antif&uacute;ngicos. Os autores consideraram que a secre&ccedil;&atilde;o de matriz extracelular e o estado de agrega&ccedil;&atilde;o contribu&iacute;ram para maior resist&ecirc;ncia antif&uacute;ngica. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Os resultados deste estudo evidenciaram diferen&ccedil;as entre a a&ccedil;&atilde;o dos produtos testados na fase planct&ocirc;nica (t=0h) e no estado de agrega&ccedil;&atilde;o (t=24h). Verificou-se que a a&ccedil;&atilde;o antiaderente do &oacute;leo essencial de R. officinalis, sob todas as concentra&ccedil;&otilde;es testadas, foi menor em t=0h do que em t=24h. Assim, este estudo demonstrou que o estado de agrega&ccedil;&atilde;o celular foi mais sens&iacute;vel &agrave; a&ccedil;&atilde;o dos produtos testados, o que contraria a hip&oacute;tese levantada por Chandra et al.<sup>13</sup>. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Nas condi&ccedil;&otilde;es deste estudo, verificou-se que o &oacute;leo essencial de R. officinalis apresentou atividade antif&uacute;ngica e antiaderente sobre C. albicans e C. tropicalis. A intera&ccedil;&atilde;o de C. albicans e C. tropicalis com outros microrganismos na constitui&ccedil;&atilde;o do biofilme oral tamb&eacute;m pode contribuir para maior susceptibilidade desta cepa &agrave; a&ccedil;&atilde;o de antif&uacute;ngicos<sup>18</sup>. Estudos posteriores devem considerar a a&ccedil;&atilde;o deste produto sobre cepas cl&iacute;nicas e outras linhagens padronizadas, atrav&eacute;s de t&eacute;cnicas que considerem a influ&ecirc;ncia da saliva humana, e intera&ccedil;&atilde;o com outros microrganismos orais.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B> CONCLUS&Atilde;O</B></font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Concluiu-se que o &oacute;leo essencial de R. officinalis exerceu atividade antif&uacute;ngica e antiaderente sobre C. albicans e C. tropicalis. As cepas testadas apresentaram inibi&ccedil;&atilde;o do crescimento quando expostas a concentra&ccedil;&atilde;o 0,5625mg/mL do &oacute;leo essencial de R. officinalis. O estado de agrega&ccedil;&atilde;o celular (t=24h) e a maior concentra&ccedil;&atilde;o do produto natural contribu&iacute;ram para maior atividade antiaderente do produto natural. Melhor desempenho foi observado para concentra&ccedil;&atilde;o 2,25mg/mL (4CIM) do &oacute;leo essencial de R. officinalis, sendo o efeito antif&uacute;ngico inferior ao apresentado pela nistatina.</font></p>        <p>&nbsp;</p>     <p><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>REFER&Ecirc;NCIAS </B></font></p>     <!-- ref --><p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Akpan A, Morgan R. Oral candidiasis. Postgrad Med J. 2002; 78:455-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=011661&pid=S1516-0939201100030000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Corr&ecirc;a EM, Andrade ED. Tratamento odontol&oacute;gico em pacientes HIV/AIDS. Rev Odonto Ci&ecirc;nc. 2006; 20:281-9. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. Nikawa H, Nishimura H, Hamada T, Yamashiro H, Samaranayake LP. Effects of modified pellicles on Candida biofilm formation on acrylic surfaces. Mycoses. 1999; 42:37-40. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Rex JH, Walsh TJ, Sobel JD, Filler SG, Pappas PG, Dismukes WE, et al. Practice guidelines for the treatment of candidiasis. J Infect Dis. 2000; 30:662-78. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5 Khan R, Islam B, Akram M, Shakil S, Ahmad AA, Ali SM, et al. Antimicrobial activity of five herbal extracts against multi drug resistant (MRD) strains of bacteria and fungus of clinical origin. Mol Cells. 2009; 14:586-97.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 6. Lima IO, Oliveira RAG, Lima EO, Farias NMP, Souza EL. Atividade antif&uacute;ngica de &oacute;leos essenciais sobre esp&eacute;cies de Candida. Rev Bras Farmacogn. 2006; 16:197-201.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 7. Fontenelle ROS, Morais SM, Brito EHS, Kerntopf MR, Brilhante RSN, Cordeiro RA, et al. Chemical composition, toxicological aspects and antifungal activity of essential oil from Lippia sidoides Cham. J Antimicrob Chemother. 2007; 59:934-40. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. Pozzatti P, Loreto ES, Lopes PGM, Athayde ML, Santurio JM, Alves SH. Comparison of the susceptibilities of clinical isolates of Candida albicans and Candida dubliniensis to essential oils. Mycoses. 2009; 53:12-5. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. Castro RD, Lima EO. 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<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> 11. Aligiannis N, Kalpoutzakis E, Mitaku S, Chinou JB. Composition and antimicrobial activity of the essential oils of two origanum species. J Agric Food Chem. 2001; 49:4168-70. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. Carreto CFP, Navas EAFA, Paradella TC, Oliveira LD, Junqueira JC, Jorge AOC. Efeitos do ch&aacute; de tomilho sobre a ader&ecirc;ncia in vitro de Streptococcus mutans ao esmalte dent&aacute;rio e Candida albicans &agrave; resina acr&iacute;lica. Rev Odontol UNESP. 2007; 36:281-6. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. Chandra J, Mukherjee PK, Leidich SD, Faddoul FF, Hoyer JJ, Douglas LJ, Ghannoum MA. Antifungal resistance of candidal biofilms formed on denture acrylic in vitro. J Dent Res. 2001; 80:903-8. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. NCCLS. M&eacute;todo de refer&ecirc;ncia para testes de dilui&ccedil;&atilde;o em caldo para a determina&ccedil;&atilde;o da sensibilidade a terapia antif&uacute;ngica das leveduras. Norma M27-A2 do NCCLS. Pensylv&acirc;nia: NCCLS; 2002. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. Nascimento PFC, Nascimento ALC, Rodrigues CS, Antoniolli AR, Santos PO, Barbosa-J&uacute;nior AM, et al. Atividade antimicrobiana dos &oacute;leos essenciais: uma abordagem multifatorial dos m&eacute;todos. Rev Bras Farmacogn. 2007; 17:108-13. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16. Scorzoni L, Benaducci T, Almeida AMF, Silva DHS, Bolzani VS, Mendes-Giannini MJS. Comparative study of disk diffusion and microdilution methods for evaluation of antifungal activity of natural compounds against medical yeasts Candida spp and Cryptococcus sp. Rev Ci&ecirc;nc Farm B&aacute;sica Apl. 2007; 28:25-34.</font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17. Packer JF, Luz MMS. M&eacute;todo para avalia&ccedil;&atilde;o e pesquisa da atividade antimicrobiana de produtos de origem natural. Rev Bras Farmacogn. 2007; 17:102-7. </font></p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18. Thein ZM, Samaranayake YH, Samaranayake LP. Effect of oral bacteria on growth and survival of Candida albicans biofilms. Arch Oral Biol. 2006; 51:672-80.</font></p>     <p>&nbsp;</p>     <p>&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="back"/></a><a href="#top"><img src="/img/revistas/aodo/v47n3/seta.jpg" border="0" align="absmiddle"/></a><b>Autor correspondente:</b>    <br>   Yuri Wanderley Cavalcanti     <br>Av. Des. Hilton Souto Maior, 6701. Qd. 765, Lt. 117, Portal do Sol     <br>CEP: 58046-600 - Jo&atilde;o Pessoa &ndash; PB - Brasil</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">    <br> E-mail: <a href="mailto:yuri.wanderley@yahoo.com.br" target="_blank">yuri.wanderley@yahoo.com.br</a></font></p>      <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recebido em 10/02/2011 &ndash; Aceito em 24/05/2011</b></font></p>      <p>&nbsp;</p>      ]]></body>
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